植物DNA提取原理
植物DNA的提取
1、目的要求
学习从新鲜的叶片中提取植物总DNA的方法。
2、实验原理
本实验介绍的就是一种快速简便提取植物总DNA的方法：先将新鲜的叶片在液氨中研磨，以机械力破碎细胞壁，然后加入十六烷三甲基溴化铵（简称CBA,是一种阳离子去污剂)分离缓冲液，使细胞膜破裂，同时将核酸与植物多糖等杂质分开。再经氯仿-异戊醇提取去除蛋白，即可得到适合于酶切的DNA。
3、试剂和器材
一、试剂
CTBA抽提缓冲液：2%CTBA.100mmolL Tris-HCl,pH8.0;
20mmolL EDTA;1.4molL
NaCl;0.2%(vv)巯基乙醇共100mL:称取2 g CTBA,8.18 g NaCI,0.74 g EDTA Na22H20,加入10mL1molL的Tris-HCl,pH8.0,0.2mL的巯基乙醇，加水定容至100mL.
TE:TrisEDTA缓冲液：10mmolL Tris-HCl,pH8.0;1mmolL EDTA。
异丙醇：乙醇：氯仿一异戊醇(24：1，V:V):液氮。
二、材料
新鲜植物叶片。
三、材
研钵：离心机：恒温水浴。
4、操作方法
1.称取lg新鲜叶片，置于预冷的研钵中，倒入液氮，将叶片研至粉末。
2.将叶片粉末转入一个30mL离心管中。
3。加10 mL CTBA抽提缓冲液，轻轻转动离心管使之混匀。于65℃温育10min。加入等体积的氯仿一异戊醇，轻轻颠倒混匀。
4.室温下4000rmin离心10min,回收上层水相。在回收的上层水相中。
5。加入23体积预冷的异丙醇（预冷至一20℃），轻轻混匀，置冰箱中放置数小时梦至过夜，使核酸沉淀下来。
6.室温下4000rmin离心10min。
7.小心倒去上清液，用80%乙醇洗涤沉淀物.尽量沥干乙醇，置于真空干燥器内干称重，计算产率。
8.将DNA沉淀溶于1mLTE中。
原理：植物细胞中DNA位于细胞核和细胞质中，分离植物总DNA首先要破碎细胞壁，然后用SDS、CTAB、PEX等试剂裂解细胞膜系统，释放DNA到DNA提取介质中。然后使DNA与蛋白质、多糖、多酚类物质分开，在乙醇或异丙醇作用下沉淀DNA。
简单来说就是去掉植物细胞壁，细胞膜，质体，线粒体，叶绿体，剩下细胞核了。就是DNA了。
通常采用机械研磨的方法破碎植物的组织和细胞，由于植物细胞匀浆含有多种酶类(尤其是氧化酶类)对DNA的抽提产生不利的影响，在抽提缓冲液中需加入抗氧化剂或强还原剂(如巯基乙醇)以降低这些酶类的活性。
在液氮中研磨，材料易于破碎，并减少研磨过程中各种酶类的作用。
十二烷基肌酸钠(sarkosyl)、十六烷基三甲基溴化铵(hexadyltrimethylammomumbromide，简称为CTAB)、十二烷基硫酸钠(sodiumdodecylsulfate，简称SDS)等离子型表面活性剂，能溶解细胞膜和核膜蛋白，使核蛋白解聚，从而使DNA得以游离出来。
再加入苯酚和氯仿等有机溶剂，能使蛋白质变性，并使抽提液分相，因核酸(DNA、RNA)水溶性很强，经离心后即可从抽提液中除去细胞碎片和大部分蛋白质。
上清液中加入无水乙醇使DNA沉淀，沉淀DNA溶于TE溶液中，即得植物总DNA溶液。
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